პროლინი (%)

2.43

1.65

1.98

0.73

1.88

1.81

2.43

2.2 ფარდობითი მოლეკულური მასის განაწილების კალიბრაციის მრუდში გამოყენებული სტანდარტული ნივთიერებები: ინსულინი, მიკოპეპტიდები, გლიცინ-გლიცინ-თიროზინ-არგინინი, გლიცინ-გლიცინ-გლიცინ

3 ინსტრუმენტი და აღჭურვილობა

23.2

21.4

22.2

16.1

22.3

20.8

0.93

23.9

27.5

საერთო ჯამში, Sustar-ის პროდუქტებში ამინომჟავების პროპორცია უფრო მაღალია, ვიდრე Zinpro-ს პროდუქტებში.

ნაწილი 8 გამოყენების ეფექტები

მიკროელემენტების სხვადასხვა წყაროს გავლენა გვიან კვერცხმდებელი ქათმების პროდუქტიულობასა და კვერცხის ხარისხზე.

2.40

წარმოების პროცესი

1.68

მიზნობრივი ჩელაციური ტექნოლოგია

ემულსიფიკაციის ტექნოლოგია

წნევით შესხურებისა და გაშრობის ტექნოლოგია

2.42

გაგრილების და დეჰუმიდიფიკაციის ტექნოლოგია

1.68

გარემოს კონტროლის მოწინავე ტექნოლოგია

დანართი A: პეპტიდების ფარდობითი მოლეკულური მასის განაწილების განსაზღვრის მეთოდები

სტანდარტის მიღება: GB/T 22492-2008

1 ტესტის პრინციპი:

ის განისაზღვრა მაღალი ხარისხის გელის ფილტრაციის ქრომატოგრაფიით. ანუ, ფოროვანი შემავსებლის, როგორც სტაციონარულ ფაზად გამოყენებით, განცალკევებისთვის ნიმუშის კომპონენტების ფარდობითი მოლეკულური მასის ზომის სხვაობის საფუძველზე, რომელიც აღმოჩენილია 220 ნმ ულტრაიისფერი შთანთქმის ტალღის სიგრძის პეპტიდურ ბმაზე, გელის ფილტრაციის ქრომატოგრაფიით ფარდობითი მოლეკულური მასის განაწილების დასადგენად განკუთვნილი მონაცემთა დამუშავების პროგრამული უზრუნველყოფის გამოყენებით (ანუ GPC პროგრამული უზრუნველყოფით), დამუშავდა ქრომატოგრამები და მათი მონაცემები, გამოთვლილი სოიოს პეპტიდის ფარდობითი მოლეკულური მასის ზომისა და განაწილების დიაპაზონის მისაღებად.

2. რეაგენტები

ექსპერიმენტული წყალი უნდა აკმაყოფილებდეს GB/T6682-ში მოცემულ მეორადი წყლის სპეციფიკაციას, გამოყენებული რეაგენტები, სპეციალური დებულებების გარდა, უნდა იყოს ანალიტიკურად სუფთა.

2.1 რეაგენტები მოიცავს აცეტონიტრილს (ქრომატოგრაფიულად სუფთა), ტრიფტორძმარმჟავას (ქრომატოგრაფიულად სუფთა),

2.2 ფარდობითი მოლეკულური მასის განაწილების კალიბრაციის მრუდში გამოყენებული სტანდარტული ნივთიერებები: ინსულინი, მიკოპეპტიდები, გლიცინ-გლიცინ-თიროზინ-არგინინი, გლიცინ-გლიცინ-გლიცინ

3 ინსტრუმენტი და აღჭურვილობა

3.1 მაღალი ხარისხის თხევადი ქრომატოგრაფი (HPLC): ქრომატოგრაფიული სამუშაო სადგური ან ინტეგრატორი ულტრაიისფერი დეტექტორით და GPC მონაცემთა დამუშავების პროგრამული უზრუნველყოფით.

3.2 მობილური ფაზის ვაკუუმური ფილტრაციისა და დეგაზაციის მოწყობილობა.

3.3 ელექტრონული სასწორი: გრადუირებული მნიშვნელობა 0.000 1 გ.

4 ოპერაციული ნაბიჯი

4 ოპერაციული ნაბიჯი
0.45

4.1 ქრომატოგრაფიული პირობები და სისტემის ადაპტაციის ექსპერიმენტები (საცნობარო პირობები)

  • 4.1.1 ქრომატოგრაფიული სვეტი: TSKgelG2000swxl300 მმ × 7.8 მმ (შიდა დიამეტრი) ან სხვა იმავე ტიპის გელის სვეტები მსგავსი მახასიათებლებით, რომლებიც შესაფერისია ცილებისა და პეპტიდების დასადგენად.
  • 4.1.2 მობილური ფაზა: აცეტონიტრილი + წყალი + ტრიფტორძმარმჟავა = 20 + 80 + 0.1.
  • 4.1.3 აღმოჩენის ტალღის სიგრძე: 220 ნმ.
  • 4.1.4 ნაკადის სიჩქარე: 0.5 მლ/წთ.
  • 4.1.5 აღმოჩენის დრო: 30 წთ.
  • 4.1.6 ნიმუშის ინექციის მოცულობა: 20μL.
  • 4.1.7 სვეტის ტემპერატურა: ოთახის ტემპერატურა.
  • 4.1.8 იმისათვის, რომ ქრომატოგრაფიული სისტემა აკმაყოფილებდეს დეტექციის მოთხოვნებს, დადგინდა, რომ ზემოთ მოცემული ქრომატოგრაფიული პირობების შემთხვევაში, გელის ქრომატოგრაფიული სვეტის ეფექტურობა, ანუ ფირფიტების თეორიული რაოდენობა (N), არ უნდა იყოს 10000-ზე ნაკლები, რაც გამოითვლება ტრიპეპტიდური სტანდარტის (გლიცინ-გლიცინ-გლიცინ) პიკების საფუძველზე.
  • 4.2 ფარდობითი მოლეკულური მასის სტანდარტული მრუდების წარმოქმნა
  • ზემოთ ჩამოთვლილი სხვადასხვა ფარდობითი მოლეკულური მასის პეპტიდური სტანდარტული ხსნარები 1 მგ/მლ მასის კონცენტრაციით მომზადდა მობილური ფაზის შესაბამისობის მეთოდით, შეერია გარკვეული პროპორციით, შემდეგ გაფილტრული იქნა ორგანული ფაზის მემბრანით 0.2 μm~0.5 μm ფორების ზომით და შეყვანილი იქნა ნიმუშში, რის შემდეგაც მიღებული იქნა სტანდარტების ქრომატოგრამები. ფარდობითი მოლეკულური მასის კალიბრაციის მრუდები და მათი განტოლებები მიღებული იქნა ფარდობითი მოლეკულური მასის შეკავების დროის ლოგარითმის ან წრფივი რეგრესიის გამოყენებით.

4.3 ნიმუშის დამუშავება

0.29

10 მლ მოცულობის კოლბაში ზუსტად აწონეთ 10 მგ ნიმუში, დაამატეთ ცოტაოდენი მოძრავი ფაზა, ულტრაბგერითი შენჯღრიეთ 10 წუთის განმავლობაში, ისე, რომ ნიმუში სრულად გაიხსნას და შეერიოს, განზავდეს მოძრავი ფაზით სასწორამდე და შემდეგ გაფილტრული იქნას ორგანული ფაზის მემბრანით, რომლის ფორების ზომაა 0.2μm~0.5μm, და ფილტრატი გაანალიზდა A.4.1-ში მოცემული ქრომატოგრაფიული პირობების შესაბამისად.

  • 5. ფარდობითი მოლეკულური მასის განაწილების გაანგარიშება
  • 4.3 პუნქტში მომზადებული ნიმუშის ხსნარის 4.1 პუნქტში მოცემული ქრომატოგრაფიული პირობების გათვალისწინებით ანალიზის შემდეგ, ნიმუშის ფარდობითი მოლეკულური მასა და მისი განაწილების დიაპაზონი შეიძლება მიღებულ იქნას ნიმუშის ქრომატოგრაფიული მონაცემების კალიბრაციის მრუდში 4.2 GPC მონაცემთა დამუშავების პროგრამული უზრუნველყოფის გამოყენებით ჩასმით. სხვადასხვა პეპტიდების ფარდობითი მოლეკულური მასების განაწილება შეიძლება გამოითვალოს პიკის ფართობის ნორმალიზაციის მეთოდით, ფორმულის მიხედვით: X=A/A სულ × 100
  • ფორმულაში: X - შეფარდებითი მოლეკულური მასის პეპტიდის მასური წილი ნიმუშში არსებულ მთლიან პეპტიდში, %);
  • A - ფარდობითი მოლეკულური მასის პეპტიდის პიკური ფართობი;
  • სულ A - თითოეული ფარდობითი მოლეკულური მასის პეპტიდის პიკური ფართობების ჯამი, გამოთვლილი ერთი ათობითი ნიშნის სიზუსტით.
  • 6 განმეორებადობა
  • განმეორებადობის პირობებში მიღებულ ორ დამოუკიდებელ განსაზღვრებას შორის აბსოლუტური სხვაობა არ უნდა აღემატებოდეს ორი განსაზღვრის საშუალო არითმეტიკულის 15%-ს.
  • დანართი B: თავისუფალი ამინომჟავების განსაზღვრის მეთოდები
  • სტანდარტის მიღება: Q/320205 KAVN05-2016
  • 1.2 რეაგენტები და მასალები
  • გამყინვარების ძმარმჟავა: ანალიტიკურად სუფთა
  • პერქლორინის მჟავა: 0.0500 მოლ/ლ
  • ინდიკატორი: 0.1%-იანი კრისტალური იისფერი ინდიკატორი (გამყინვარების ძმარმჟავა)
  • 2. თავისუფალი ამინომჟავების განსაზღვრა

ნიმუშები გაშრეს 80°C ტემპერატურაზე 1 საათის განმავლობაში.

ნიმუში მოათავსეთ მშრალ კონტეინერში, რათა ბუნებრივად გაგრილდეს ოთახის ტემპერატურამდე ან გააგრილოს გამოსაყენებელ ტემპერატურამდე.250 მლ-იან მშრალ კონუსურ კოლბაში აწონეთ დაახლოებით 0.1 გ ნიმუში (სიზუსტით 0.001 გ).სწრაფად გადადით შემდეგ ეტაპზე, რათა თავიდან აიცილოთ ნიმუშის მიერ გარემოს ტენიანობის შთანთქმა.დაამატეთ 25 მლ გამყინვარებული ძმარმჟავა და კარგად აურიეთ არაუმეტეს 5 წუთისა.დაამატეთ კრისტალური იისფერი ინდიკატორის 2 წვეთიტიტრაცია პერქლორინის მჟავას 0.0500 მოლ/ლ (±0.001) სტანდარტული ტიტრაციული ხსნარით მანამ, სანამ ხსნარის ფერი იისფერიდან საბოლოო წერტილამდე არ შეიცვლება.

ჩაიწერეთ მოხმარებული სტანდარტული ხსნარის მოცულობა.

  • ამავდროულად ჩაატარეთ ცარიელი ტესტი.
  • 3. გაანგარიშება და შედეგები
  • რეაგენტში თავისუფალი ამინომჟავის შემცველობა X გამოისახება მასური ფრაქციით (%) და გამოითვლება ფორმულის მიხედვით: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, ფორმულაში:
  • C - სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარის კონცენტრაცია მოლებში ლიტრზე (მოლ/ლ)
  • V1 - ნიმუშების ტიტრაციისთვის გამოყენებული მოცულობა სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარით, მილილიტრებში (მლ).
  • Vo - მოცულობა, რომელიც გამოიყენება ტიტრაციის ბლანკისთვის სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარით, მილილიტრებში (მლ);

M - ნიმუშის მასა, გრამებში (გ).

0.1445: ამინომჟავების საშუალო მასა, რომელიც ექვივალენტურია 1.00 მლ სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარისა [c (HClO4) = 1.000 მოლი/ლ]. 4.2.3 ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ტიტრაციის ხსნარი: კონცენტრაცია c [Ce(SO4)2] = 0.1 მოლ/ლ, მომზადებული GB/T601-ის მიხედვით.
სტანდარტების მიღება: Q/70920556 71-2024 1. განსაზღვრის პრინციპი (მაგალითად, Fe) ამინომჟავების რკინის კომპლექსებს ძალიან დაბალი ხსნადობა აქვთ უწყლო ეთანოლში და თავისუფალი ლითონის იონები ხსნადია უწყლო ეთანოლში, ამინომჟავების რკინის კომპლექსების ხელაციის სიჩქარის დასადგენად გამოყენებული იქნა ამ ორ იონს შორის ხსნადობის სხვაობა უწყლო ეთანოლში.
ფორმულაში: V1 - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარის მოცულობა, რომელიც მოხმარებულია სატესტო ხსნარის ტიტრაციისთვის, მლ; უწყლო ეთანოლი; დანარჩენი იგივეა, რაც GB/T 27983-2011-ის 4.5.2 პუნქტში. 3. ანალიზის ეტაპები
პარალელურად ჩაატარეთ ორი ცდა. აწონეთ 0.1 გ ნიმუში, რომელიც გამშრალია 103±2℃ ტემპერატურაზე 1 საათის განმავლობაში, სიზუსტით 0.0001 გ, დაამატეთ 100 მლ უწყლო ეთანოლი გასახსნელად, გაფილტრეთ, ფილტრის ნარჩენი გარეცხეთ 100 მლ უწყლო ეთანოლით მინიმუმ სამჯერ, შემდეგ გადაიტანეთ ნარჩენი 250 მლ კონუსურ კოლბაში, დაამატეთ 10 მლ გოგირდმჟავას ხსნარი GB/T27983-2011-ის 4.5.3 პუნქტის შესაბამისად და შემდეგ შეასრულეთ შემდეგი ნაბიჯები GB/T27983-2011-ის 4.5.3 პუნქტის „გასაყრელად გაცხელება და შემდეგ გაგრილება“-ს შესაბამისად. ერთდროულად ჩაატარეთ ცარიელი ტესტი. 4. რკინის საერთო შემცველობის განსაზღვრა 4.1 განსაზღვრის პრინციპი იგივეა, რაც GB/T 21996-2008-ის 4.4.1 პუნქტში.

4.2. რეაგენტები და ხსნარები

4.2.1 შერეული მჟავა: 700 მლ წყალს დაუმატეთ 150 მლ გოგირდმჟავა და 150 მლ ფოსფორმჟავა და კარგად აურიეთ. 4.2.2 ნატრიუმის დიფენილამინ სულფონატის ინდიკატორის ხსნარი: 5 გ/ლ, მომზადებული GB/T603-ის მიხედვით. 4.2.3 ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ტიტრაციის ხსნარი: კონცენტრაცია c [Ce(SO4)2] = 0.1 მოლ/ლ, მომზადებული GB/T601-ის მიხედვით.
4.3 ანალიზის ეტაპები პარალელურად ჩაატარეთ ორი ცდა. აწონეთ ნიმუშის 0.1 გ, სიზუსტით 020001 გ, მოათავსეთ 250 მლ კონუსურ კოლბაში, დაამატეთ 10 მლ შერეული მჟავა, გახსნის შემდეგ დაამატეთ 30 მლ წყალი და ნატრიუმის დიანილინ სულფონატის ინდიკატორის ხსნარის 4 წვეთი და შემდეგ შეასრულეთ შემდეგი ნაბიჯები GB/T21996-2008-ის 4.4.2 პუნქტის შესაბამისად. ერთდროულად ჩაატარეთ ცარიელი ტესტი. 4.4 შედეგების წარმოდგენა ამინომჟავა რკინის კომპლექსების რკინის საერთო შემცველობა X1 რკინის მასური ფრაქციით, მნიშვნელობა გამოხატული %-ში, გამოითვალა ფორმულის (1) მიხედვით:
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 V0 - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარი, რომელიც გამოიყენება ცარიელი ხსნარის ტიტრაციისთვის, მლ; V0 - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარი, რომელიც გამოიყენება ცარიელი ხსნარის ტიტრაციისთვის, მლ; C - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარის ფაქტობრივი კონცენტრაცია, მოლ/ლ5. რკინის შემცველობის გაანგარიშება ჩელატებშიხელატში რკინის შემცველობა X2 რკინის მასური ფრაქციით, მნიშვნელობა გამოხატული %-ში, გამოითვალა ფორმულის მიხედვით: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/მ1 × 100
ფორმულაში: V1 - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარის მოცულობა, რომელიც მოხმარებულია სატესტო ხსნარის ტიტრაციისთვის, მლ; V2 - ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარი, რომელიც გამოიყენება ცარიელი ხსნარის ტიტრაციისთვის, მლ;nom1 - ნიმუშის მასა, g. განსაზღვრის შედეგებად აიღეთ პარალელური განსაზღვრის შედეგების არითმეტიკული საშუალო და პარალელური განსაზღვრის შედეგების აბსოლუტური სხვაობა არ უნდა აღემატებოდეს 0.3%-ს. 0.05585 - შავი რკინის მასა, გამოხატული გრამებში, რაც ექვივალენტურია ცერიუმის სულფატის სტანდარტული ხსნარის 1.00 მლ C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 მოლ/ლ.nom1 - ნიმუშის მასა, g. განსაზღვრის შედეგებად აიღეთ პარალელური განსაზღვრის შედეგების არითმეტიკული საშუალო და პარალელური განსაზღვრის შედეგების აბსოლუტური სხვაობა არ უნდა აღემატებოდეს 0.3%-ს. 6. ჩელაციური მაჩვენებლის გაანგარიშებაჩელაციური მაჩვენებელი X3, მნიშვნელობა გამოხატულია %-ში, X3 = X2/X1 × 100დანართი C: ზინპროს ხელაციის სიჩქარის განსაზღვრის მეთოდები

სტანდარტის მიღება: Q/320205 KAVNO7-2016

1. რეაგენტები და მასალები

ა) გამყინვარების ძმარმჟავა: ანალიტიკურად სუფთა; ბ) პერქლორინის მჟავა: 0.0500 მოლ/ლ; გ) ინდიკატორი: 0.1%-იანი კრისტალური იისფერი ინდიკატორი (გამყინვარების ძმარმჟავა)

2. თავისუფალი ამინომჟავების განსაზღვრა

2.1 ნიმუშები გაშრეს 80°C ტემპერატურაზე 1 საათის განმავლობაში.

2.2 ნიმუში მოათავსეთ მშრალ კონტეინერში, რათა ბუნებრივად გაგრილდეს ოთახის ტემპერატურამდე ან გააგრილოს გამოსაყენებელ ტემპერატურამდე.

2.3 250 მლ-იან მშრალ კონუსურ კოლბაში აწონეთ დაახლოებით 0.1 გ ნიმუში (სიზუსტით 0.001 გ-მდე).

2.4 სწრაფად გადადით შემდეგ ეტაპზე, რათა თავიდან აიცილოთ ნიმუშის მიერ გარემოს ტენიანობის შთანთქმა.

2.5 დაამატეთ 25 მლ გამყინვარების ძმარმჟავა და კარგად აურიეთ არაუმეტეს 5 წუთისა.

2.5 დაამატეთ 25 მლ გამყინვარების ძმარმჟავა და კარგად აურიეთ არაუმეტეს 5 წუთისა.

0.00

2.6 დაამატეთ კრისტალური იისფერი ინდიკატორის 2 წვეთი.

0.00

2.7 ტიტრაცია მოახდინეთ პერქლორინის მჟავას 0.0500 მოლ/ლ (±0.001) სტანდარტული ტიტრაციული ხსნარით, სანამ ხსნარი არ შეიცვლება იისფერიდან მწვანეში 15 წამის განმავლობაში, საბოლოო წერტილში ფერის შეცვლის გარეშე.

0.00

2.8 ჩაიწერეთ მოხმარებული სტანდარტული ხსნარის მოცულობა.

2.5 დაამატეთ 25 მლ გამყინვარების ძმარმჟავა და კარგად აურიეთ არაუმეტეს 5 წუთისა.
0.09

2.9 პარალელურად ჩაატარეთ ცარიელი ტესტი.

  • 3. გაანგარიშება და შედეგები
  • კატალანური
  • Physicochemical parameters

V1 - ნიმუშების ტიტრაციისთვის გამოყენებული მოცულობა სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარით, მილილიტრებში (მლ).

Vo - მოცულობა, რომელიც გამოიყენება ტიტრაციის ბლანკისთვის სტანდარტული პერქლორინის მჟავას ხსნარით, მილილიტრებში (მლ);

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

მისამართი: ჩინეთი, სიჩუანის პროვინცია, ჩენგდუს ქალაქი, პუძიანგის ოლქი, ცინპუს გზა 147, შოუანის ქალაქი

ცისტინოლი (%)

ტელეფონი: 86-18880477902

პროდუქტები

0.00

არაორგანული მიკროელემენტები

  • ორგანული მიკროელემენტები
  • სუაჰილი
  • პერსონალიზებული მომსახურება
  • სწრაფი ბმულები

კომპანიის პროფილი

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
გუჯარათული დააწკაპუნეთ შეკითხვისთვის © საავტორო უფლება - 2010-2025: ყველა უფლება დაცულია. საიტის რუკა

ტოპ ძიება

ტელეფონი

ტელ. 86-18880477902 იავური ელ. ფოსტა

WhatsApp

8618880477902 ჩინური ფრანგული
Bird ჩინური ფრანგული გერმანული

ესპანური

Aquatic animals იაპონური კორეული არაბული

ბერძნული

თურქული იტალიური
Ruminant animal g/head day January 0.75   ინდონეზიური

აფრიკაანსი

შვედური

0.00
0.09

პოლონური

  • ბასკური
  • კატალანური
  • Physicochemical parameters

ჰინდი

ლაოსური

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

შონა

ბულგარული

  • სებუანო
  • This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
  • The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
  • ხორვატული

ჰოლანდიური

Application object ურდუ

ვიეტნამური

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
გუჯარათული ჰაიტური ჰაუსა კინიარუანდა

ჰმონგი

უნგრული

Piglets and fattening pigs იგბო იავური კანადა

ქმერული

ქურთული

ყირგიზული ლათინური
Bird 300~400 45~60 მაკედონური

მალაიური

მალაიალამური

Aquatic animals 200~300 30~45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

0.00
0.09

ნორვეგიული

  • პუშტუ
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

სერბული

სესოტო

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

შონა

სინდური

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

სუაჰილი

ტაჯიკური

ტამილური

ტელუგუ

ტაილანდური

Application object ურდუ

ვიეტნამური

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
იდიში იორუბა ზულუ კინიარუანდა

ორია

თურქმენული

უიღურული 250~400 37.5~60 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality;

2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion;

3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality.

Bird 300~400 45~60 1. Improve feather glossiness;

2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk;

3. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

4. Improve feed conversion and increase growth rate.

Aquatic animals January 300 45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

Ruminant animal g/head day 2.4   1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk;

2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality.

0.00
0.09

4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

  • Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

a) Mn: ≥ 10.0%

b) Total amino acids: ≥ 19.5%

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides

Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;

The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;

The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;

Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.

Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Breeding pig 200~300 30~45 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility;

2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles.

Piglets and fattening pigs 100~250 15~37.5 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance;

2. Promote growth and improve feed conversion significantly;

3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage.

Bird 250~350 37.5~52.5 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate;

3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases.

Aquatic animals 100~200 15~30 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance;

2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs.

Ruminant animal g/head day Cattle 1.25   1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage;

2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs,

and increase the newborn weight of young animals.

Goat 0.25  

Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates

0.00
S/N F: Functional attributes A: Competitive differences B: Benefits brought by competitive differences to users
1.52 Selectivity control of raw materials Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides High biological safety, avoiding cannibalism
2 Directional digestion technology for double protein biological enzyme High proportion of small molecular peptides More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability
3 Advanced pressure spray & drying technology Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed
Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations Improve the stability of feed products
4 Advanced production control technology Totally enclosed process, high degree of automatic control Safe and stable quality
5 Advanced quality control technology Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency

Part 7 Competitor Comparison

Standard VS Standard

ვალინი (%)
1.14
1.14

Comparison of peptide distribution and chelation rate of products

Sustar's products Proportion of small peptides(180-500) Zinpro's products Proportion of small peptides(180-500)
AA-Cu ≥74% AVAILA-Cu 78%
AA-Fe ≥48% AVAILA-Fe 59%
AA-Mn ≥33% AVAILA-Mn 53%
AA-Zn ≥37% AVAILA-Zn 56%

 

Sustar's products Chelation rate Zinpro's products Chelation rate
AA-Cu 94.8% AVAILA-Cu 94.8%
AA-Fe 95.3% AVAILA-Fe 93.5%
AA-Mn 94.6% AVAILA-Mn 94.6%
AA-Zn 97.7% AVAILA-Zn 90.6%

The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.

Comparison of the content of 17 amino acids in different products

Name of

amino acids

Sustar's Copper

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's

AVAILA

copper

Sustar's Ferrous Amino Acid C

helate Feed

Grade

Zinpro's AVAILA

iron

Sustar's Manganese

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's AVAILA

manganese

Sustar's Zinc

Amino Acid

Chelate Feed Grade

Zinpro's AVAILA

zinc

aspartic acid (%) 1.88 0.72 1.50 0.56 1.78 1.47 1.80 2.09
glutamic acid (%) 4.08 6.03 4.23 5.52 4.22 5.01 4.35 3.19
Serine (%) 0.86 0.41 1.08 0.19 1.05 0.91 1.03 2.81
Histidine (%) 0.56 0.00 0.68 0.13 0.64 0.42 0.61 0.00
Glycine (%) 1.96 4.07 1.34 2.49 1.21 0.55 1.32 2.69
Threonine (%) 0.81 0.00 1.16 0.00 0.88 0.59 1.24 1.11
Arginine (%) 1.05 0.78 1.05 0.29 1.43 0.54 1.20 1.89
Alanine (%) 2.85 1.52 2.33 0.93 2.40 1.74 2.42 1.68
Tyrosinase (%) 0.45 0.29 0.47 0.28 0.58 0.65 0.60 0.66
Cystinol (%) 0.00 0.00 0.09 0.00 0.11 0.00 0.09 0.00
Valine (%) 1.45 1.14 1.31 0.42 1.20 1.03 1.32 2.62
Methionine (%) 0.35 0.27 0.72 0.65 0.67 0.43 January 0.75 0.44
Phenylalanine (%) 0.79 0.41 0.82 0.56 0.70 1.22 0.86 1.37
Isoleucine (%) 0.87 0.55 0.83 0.33 0.86 0.83 0.87 1.32
Leucine (%) 2.16 0.90 2.00 1.43 1.84 3.29 2.19 2.20
Lysine (%) 0.67 2.67 0.62 1.65 0.81 0.29 0.79 0.62
Proline (%) 2.43 1.65 1.98 0.73 1.88 1.81 2.43 2.78
Total amino acids (%) 23.2 21.4 22.2 16.1 22.3 20.8 23.9 27.5

Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.

Part 8 Effects of use

Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period

1.31

Production Process

Production Process
  • Targeted chelation technology
  • Shear emulsification technology
  • Pressure spray & drying technology
  • Refrigeration & dehumidification technology
  • Advanced environmental control technology

Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides

Adoption of standard: GB/T 22492-2008

1 Test Principle:

It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.

2. Reagents

The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.

2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),

2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine

3 Instrument and equipment

3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.

3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.

3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.

4 Operating steps

4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)

4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.

4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.

4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.

4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.

4.1.5 Detection time: 30 min.

4.1.6 Sample injection volume: 20μL.

4.1.7 Column temperature: room temperature.

4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).

4.2 Production of relative molecular mass standard curves

The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.

4.3 Sample treatment

Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.

5. Calculation of relative molecular mass distribution

After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100

In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;

A - Peak area of a relative molecular mass peptide;

Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.

6 Repeatability

The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.

Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids

Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016

1.2 Reagents and materials

Glacial acetic acid: analytically pure

Perchloric acid: 0.0500 mol/L

Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

The samples were dried at 80°C for 1 hour.

Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.

Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture

Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.

Add 2 drops of crystal violet indicator

Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.

Record the volume of standard solution consumed.

Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:

C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate

Adoption of standards: Q/70920556 71-2024

1. Determination principle (Fe as an example)

Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.

2. Reagents & Solutions

Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.

3. Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.

4. Determination of total iron content

4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.

4.2. Reagents & Solutions

4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.

4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.

4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.

4.3 Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.

4.4 Representation of results

The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):

X1=(V-V0)×C×M×10-3×100

In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L

5. Calculation of iron content in chelates

The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100

In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;

0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.

m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.

6. Calculation of chelation rate

Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100

Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate

Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Reagents and materials

a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.

2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask

2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.

2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.

2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.

2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.

2.8 Record the volume of standard solution consumed.

2.9 Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)

In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

4. Calculation of chelation rate

The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.


Post time: Sep-17-2025